Статья
Адвентивная регенерация вишни в культуре in vitro
В работе проанализирована способность микрорастений вишни к адвентивной регенерации в зависимости от генотипа, типа экспланта, способа культивирования экспланта, состава питательных сред, условий культивирования. Был отработан результативный метод адвентивной регенерации вишни.
1. Сорокина И. К, Старичкова Н. И., Решетникова Т. Б., Гринъ Н. А. Основы биотехнологии растений. Культура растительных клеток и тканей: Учебное пособие. 2002. С. 45.
2. Батыжна Т. Б., Васильева В. Е. Размножение растений: Учебник. СПб., 2002. С. 232.
3. Лутова Л. А. Биотехнология высших растений: Учебник. СПб., 2003. С. 227.
4. De Klerk G.-J. Arnholdt-Schmitt В., Lieberei R. Regeneration of roots, shoots and embryos: physiological, biochemical and molecular aspects // Biologia Plantarum. Vol. 39. № 1. 1997. Р. 53-66.
5. Долгов С. В., Фирсов А. П., Бурьянов Л. И. Разработка методов регенерации и генетической трансформации вишни Cerasus vulgaris // Новые методы биотехнологии растений. Пущино, 1993. С. 18.
6. Индукция морфогенеза и тканевая селекция плодовых и ягодных культур / Под ред. В. Е. Перфильева: Методические рекомендации / ВНИИ генетики и селекции плодовых растений им. И. В. Мичурина, 1996. С. 73.
7. Tang К, Ren Z., Reustle G, Krczal G. Plant regeneration from leaves of sweet and sour cherry cultivars // Scientia Horticulturae. 2002. Vol. 93. P. 235-244.
8. Bhagwat В., David Lane W. In vitro shoot regeneration from leaves of sweet cherry (Prunus avium) «Lapins» and «Sweetheart» // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. Netherlands. 2004. Vol. 78. P. 173-181.
9. Gentile A., Monticelli S., Damiano С Adventitious shoot regeneration in peach [Prunus persica (L.) Batsch] // Plant Cell Reports. 2002. Vol. 20. P. 1011-1016.
10. Takashina Т., Nakano K, Kato R. Efficient plant regeneration culture from leaf explants of in vitro-grown sweet cherry // Acta Horticulturae: XXVI International Horticultural Congress: Genetics and Breeding of Tree Fruits and Nuts. Р. 622.
11. Burgos L., Alburquerque N. Ethylene inhibitors and low kanamycin concentrations improve adventitious regeneration from apricot leaves // Plant Cell Reports. 2003. Vol. 21. P. 1167-1174.
12. Hammatt N, Grant N. J. Shoot regeneration from leaves of Prunus serotina Ehrh. (black cherry) and P. avium L. (wild cherry) // Plant Cell Reports. 1998. Vol. 17. P. 526-530.
13. Grant Neil J, Hammatt Neil. Adventitious shoot development from wild cherry (Prunus avium L.) leaves // New Forests. Netherlands. 2000. Vol. 20. P. 287-295.
14. James D. K, Possey A. J, Malhotro S. B. Organogenesis in callus derived from stem and leaf tissues of apple and cherry rootstocks // Plant Cell Tissue Organ Cult. 1984.Vol. 3. № 4.
15. Jones O. P., Jacqueline A. Gayner and Watkins R. Plant regeneration from callus tissue cultures of the cherry rootstook Colt (Prunus avium xP. pseudocerasus) and the apple rootstook M. 25 (Malus pumila) // The Journal of Horticultural Science. England, 1984. Vol. 59. № 4. P. 463-467.
16. Graham J., Lasi L., Millam S. Genotipe-specific regeneration from a number of Rubus cultivars // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1997. Vol. 48. P. 167-173.
17. Сковородников Д. К Особенности клонального микроразмножения in vitro и ускорение селекции новых ремонтантных форм малины. // Автореф. дис. … канд. биол. наук. Брянск, 2004. С. 20.
18. Passey A. J., Barrett K. J., James D. J. Adventitious shoot regeneration from seven commercial strawberry cultivars (Fragaria x ananassa Duch.) using a range of explant types // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. Netherlands. 2003. Vol. 21. P. 397-401.